手性分离用多糖型手性色谱柱
Lux系列直链淀粉和纤维素手性选择器提供了多种互补的选择性，使您能够在反相、极性有机、正相和SFC条件下筛选对映体分离条件。
为什么选择Lux手性色谱柱？
Lux用 途广泛：在正相、极性有机、SFC和反相条件下稳定 Lux坚 固 耐 用：压力稳定高达 300 bar Lux的高 效 性：高 效 率和负载能力 Lux非常灵活：3μm和5μm预装柱 |
色谱柱特性
色谱柱安装
您的液相色谱系统的初始设置对确保色谱柱性能至关重要：
确保您的液相色谱系统满足以下条件：
1. 密封、管线和进样器清洁
2. 已预充管线（没有干燥的管线或气泡）
3. 基线稳定
4. 压强一致
使用 HPLC 级、与色谱柱的出厂溶剂混溶的流动相冲洗液相色谱系统泵和管线。
流动相起始条件检查清单：
1. 使用前，确保 HPLC 级流动相已混合均匀、过滤和脱气。
2. 确保色谱柱出厂溶剂、液相色谱系统内的剩余溶剂和流动相溶剂混溶。
将流速设置为 0.1mL/min（适用于 2.1-4.6mm 内径），安装色谱柱，确保箭头方向与流动方向一致。将流速升高至 0.2mL/min（2.1mm 内径）或 1.0mL/min（4.6mm 内径），保持 5-10 分钟。使用小烧杯收集溶剂。
停止流量并擦洗色谱柱的出样口端以移除任何颗粒，然后再连接到检测器。
将接头/管件安装到出样口端，并以较低的流速（约 0.2 mL/min）通过至少 10 倍于色谱柱容积的溶剂，同时监测背压。
1. 压强稳定说明流速一致，压强波动则说明系统中存在气体。
2. 压强 da范围波动可能会冲击和损坏色谱柱，因此，监测压强至关重要。
监测压强和检测器信号，在两者均稳定后，色谱柱可以投入使用。
SFC 色谱柱安装
1. 将色谱柱安装在 SFC 仪器柱温箱室中
2. 将 SFC 仪器背压调节器设置为大约 80-100bar，并在使用前用至少十倍于色谱柱容积的 SFC 流动相平衡色谱柱
3. SFC 流动相一种比较好的起始选择是 CO2/甲醇或 CO2/乙醇（体积比为 80:20），带或者不带添加剂均可。
4. 4.6mm 内径色谱柱的zui 佳流速为 3-6mL/min。我们建议将流速逐渐升高到 3mL/min，以免背压超过 300bar (4300psi)。
溶剂切换
在从一种流动相转换到另一种时，必xu采用适当的色谱柱清洗程序。在清洗时bi须仔细考虑不同流动相成分的混溶性。建议将 Lux 涂层色谱柱专门用于正相、反相或极性有机模式。不建议在不同的运行条件下来回切换。
正相到极性有机或反相
要将色谱柱从正相安全地转移到极性有机或反相条件，请使用以下程序：
1. 将流速设为 0.5mL/min
2. 使用 10 倍于色谱柱容积的甲醇/乙醇（体积比为 90:10）冲洗色谱柱
a. 例如，为 250 x 4.6mm 色谱柱使用 25mL
3. 使用至少 10 倍于色谱柱容积的新流动相活化色谱柱。
**如果您的反相流动相缓冲液的盐在甲醇和/或乙醇中不混溶，请在甲醇/乙醇步骤后使用水简单地冲洗色谱柱，然后使用 10 倍于色谱柱容积的反相或极性有机流动相活化色谱柱。
反相到正相
在 Lux 色谱柱（i-Amylose-1 和 i-Cellulose-5 除外）处于反相模式后，不建议从反相切换回正相。
极性有机到正相
在 Lux 色谱柱（i-Amylose-1 和 i-Cellulose-5 除外）处于极性有机模式后，不建议切换到正相模式。
正相、极性有机或反相到 SFC
1. 使用甲醇/乙醇（体积比为 90:10）并将流速设为 0.5mL/min。
2. 在切换到 CO2 之前，使用至少 10 倍于色谱柱容积的溶剂冲洗。
3. 使用 SFC 溶剂活化时，将流速降低至 0.3mL/min，直至甲醇/乙醇冲出。
SFC 到正相、极性有机或反相
1. 使用甲醇/乙醇（体积比为 90:10）并将流速设为 0.5mL/min。
2. 使用至少 10 倍于色谱柱容积的溶剂冲洗，直至 CO2 被吹出。
3. 然后，使用至少 10 倍于色谱柱容积的新流动相活化。
典型流速、背压、温度
下面是常见规格的 Lux HPLC 色谱柱的一些典型值。这些数字不是绝dui值，并且在不同的液相色谱系统、运行参数和样品分析物/基质下可能不同。以下的数值经由己烷和 IPA 组成的溶剂系统创建。
背压上限
• Lux 液相色谱分析柱的建议zui 大压强为 4500psi (310bar)，AXIA™制备柱为 3625psi (250bar)，不过，压强限值取决于您的运行参数和系统，并且可能发生变化。
温度上限
• Lux 液相色谱柱的建议温度上限不超过 50°C，不过，温度限值取决于您的运行参数，并且可能发生变化。
流动相兼容性
Lux 手性固定相（i-Cellulose-5 和 i-Amylose-1 除外）在制造过程中涂有含多糖衍生物的硅胶。因此，即使为痕量，也bi须避免使用任何会溶解多糖衍生物的溶剂，如下所述：
四氢*喃、丙酮、氯化烃类、乙酸乙酯、二甲亚砜、二甲基甲酰胺、N-甲替甲酰胺、甲苯、甲基乙*酮和甲基叔丁醚等。
Lux i-Cellulose-5 和 i-Amylose-1 的固定化部分可以耐受注射到色谱柱上的强极性有机溶剂（例如 DMSO、DCM、乙酸乙酯、MtBE 和 THF），能够显著增强色谱柱的耐 用 性。
Lux 色谱柱在使用含有下述浓度水平添加剂的流动相时，能提供一致的结果。 不过，如果将色谱柱与这些添加剂配合使用，色谱柱柱效可能会出现一定程度的下降。因此，我们建议将色谱柱专 用于含有碱性添加剂的流动相。
对于碱性样品或酸性手性化合物，要实现手性分离并确保正确的峰形，有时候需要适当的流动相改性剂。
1. 二乙胺、乙醇胺和丁胺 (0.1-0.5%) 可用于碱性分析物
2. 三*乙酸或乙酸 (0.1-0.2%) 可用于酸性分析物。
3. 也可使用碱性和酸性流动相添加剂的混合物（例如二乙胺乙酸盐或三氟醋酸盐）。
色谱柱储存
储存前，务bi确保您的色谱柱清洁。包括移除缓冲液、盐、样品和离子配对剂。建议的储存条件为：
反相：可以使用乙腈/H2O（体积比为 85:15）和甲醇替代乙腈。
正相：正己烷/2-丙醇（体积比为 9:1）。
延长色谱柱使用寿命的提示
要在长时间使用 Lux 色谱柱后进行再生或移除潜在污染物，我们建议用 100 % 甲醇或乙醇并以适当的流速将色谱柱冲洗 2-3 小时。也可以使用反向冲洗清洗色谱柱。
利用固相萃取（Strata®-X SPE 产品）等样品制备技术或配件（Phenex™针头式过滤器），以便尽可能减少进入您的系统和色谱柱上的污染物。
使用合适的保护柱、保护柱系统 (SecurityGuard™) 在微粒阻塞您的色谱柱之前将其移除。
不要让色谱柱过载。进样合适的样品浓度和体积。请参见图表：典型载样量
在色谱柱的适当分离模式下工作。请参见色谱柱特性表，了解每种固定相适合的典型模式。
将您的色谱柱储存在合适的溶剂中。
以较低流速从一种混溶溶剂缓慢富集到另一种，正确执行溶剂切换：2.1mm 内径为 0.1mL/min，4.6mm 内径为 0.5mL/min。
典型载样量
若您在使用飞诺美Lux手性色谱柱过程中遇到任何问题，请及时联系购买的供应商！
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