COSMOSIL 5C18-MSII色谱柱4.6×250 38020-41

内径(mm)

1.0

2.0

3.0

4.6

6.0

10

20

28

柱长(mm)

ALL

ALL

ALL

ALL

ALL

20-150

250

20-100

150-250

ALL

出厂溶剂

乙腈 / 水 = 50 / 50

乙腈 / 水 = 60 / 40

甲醇 / 水 = 70 / 30

甲醇 / 水 = 70 / 30

甲醇 / 水 = 80 / 20

甲醇 / 水 = 70 / 30

甲醇 / 水 = 80 / 20

甲醇 / 水 = 80 / 20

冲洗方法

1. 去除色谱柱内的缓冲液，盐，酸的方法：
          使用不含缓冲液，盐，酸的流动相冲洗10-15分钟。
          例：流动相为甲醇/磷酸缓冲液（20mmol/L） =50/50时，就使用甲醇/水 =50/50冲洗

2. 冲洗色谱柱内附着物的方法，基线不稳时的解决方法：

• 样本不是蛋白质时，使用甲醇或四氢呋喃冲洗。

• 样品是蛋白质时，使用含0.1%三*乙酸的50-70%的乙腈/水冲洗

保存方法

1. 短期（数日）保存：
          使用不含缓冲液，盐，酸的流动相冲洗10-15分钟。保存。
          例：流动相为甲醇/磷酸缓冲液（20mmol/L） =50/50时，就使用甲醇/水 =50/50冲洗

2. 长期（1个月以上）保存：
          先用不含酸和盐的流动相清洗色谱柱，再将流动相置换为乙腈/水=70/30或 甲醇/水=70/30，保存。

pH范围

pH2～pH10

zui大耐压

20MPa

15MPa

温度范围

高可耐60度，建议在20~50度下进行分析。

可使用的溶剂

除碱溶液和强酸溶液（pH1.5以下）以外都可以使用。（强碱溶液会使硅胶溶化，强酸溶液会使固定相脱落）
  注意点：
  溶剂粘度过高会导致压力上升，请将压力控制在20Mpa以下。 使用酸性流动相或凝固点高的溶剂后，清洗色谱柱。

注意事项

• 一般情况下缓冲液浓度为0.005~0.02 mol/L即可。

• 流动相在使用前要通过0.5µm以下的滤膜过滤。

• 水90%以上的留动相可能会导致再现性降低。

• 蛋白质反相模式分析时，请使用大孔径色谱柱（孔隙直径300Å) COSMOSIL Protein - R（粒径5µm）。

色谱柱

2.5μm C₁₈-MS-II

内径(mm)

2.0

3.0

柱长(mm)

ALL

ALL

出厂溶剂

乙腈 / 水 = 50 / 50

冲洗方法

1. 去除色谱柱内的缓冲液，盐，酸的方法：使用不含缓冲液，盐，酸的流动相冲洗10-15分钟。
          例：流动相为甲醇/磷酸缓冲液（20mmol/L） =50/50时，就使用甲醇/水 =50/50冲洗

2. 冲洗色谱柱内附着物的方法，基线不稳时的解决方法

• 样本不是蛋白质时，使用甲醇或四氢呋喃冲洗。

• 样品是蛋白质时，使用含0.1%三*乙酸的50-70%的乙腈/水冲洗

保存方法

1. 短期（数日）保存：
          使用不含缓冲液，盐，酸的流动相冲洗10-15分钟。保存。
          例：流动相为甲醇/磷酸缓冲液（20mmol/L） =50/50时，就使用甲醇/水 =50/50冲洗

2. 长期（1个月以上）保存：
          使用后，先用不含酸和盐的流动相清洗色谱柱，再将流动相置换为乙腈/水=70/30或 甲醇/水=70/30，保存。

4.6 mm I.D. x 150 mm

38019-81

4.6 mm I.D. x 250 mm

38020-41